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caspase-6 Double Nickase Plasmid (h) | sc-402563-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
caspase-6 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-402563-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CASP6 kodiert die Caspase-6, eine Cystein-Aspartat-Protease, die in der apoptotischen Signalübertragung als Effektor-Caspase wirkt und zudem zu nicht-apoptotischer Proteolyse beitragen kann, die zytoskelettale und nukleäre Substrate betrifft. Caspase-6 wird nachgeschaltet sowohl der intrinsischen als auch der extrinsischen Todeswege aktiviert und ist an Proteasekaskaden beteiligt, die den Zellabbau, inflammatorische Wechselwirkungen und zelluläre Stressantworten mitprägen. Eine fehlregulierte CASP6-Aktivität wurde mit einer abnormen Vulnerabilität von Neuronen und Immunzellen in Verbindung gebracht; es gibt Berichte über Assoziationen mit Neurodegeneration und weiteren Pathologien, bei denen veränderte Apoptose oder Proteostase eine Rolle spielt. Diese Eigenschaften machen CASP6 zu einem nützlichen Ziel, um Hierarchien in Caspase-Netzwerken, Substratspezifität und Zellschicksalsentscheidungen in humanen Modellsystemen zu untersuchen.
caspase-6 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CASP6-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CASP6 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CASP6-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CASP6-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.