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caspase-12 Double Nickase Plasmid (m) | sc-419463-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
caspase-12 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-419463-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das murine Gen **Casp12** codiert **Caspase-12**, eine Cystein-Aspartat-Protease, die mit der Modulation inflammatorischer Signalwege und von Stressantworten des endoplasmatischen Retikulums (ER) in Verbindung steht. Caspase-12 wurde damit in Zusammenhang gebracht, Kaskaden der Caspase-Aktivierung zu regulieren und mit angeborenen Immunwegen zu interagieren, einschließlich Reaktionen auf mikrobielle Komponenten sowie auf die Signalübertragung durch inflammatorische Zytokine. In murinen Systemen werden Aktivität und Expression von Casp12 häufig im Kontext entzündungsassoziierter Gewebeschädigung, Wirt–Pathogen-Interaktionen und stressinduzierter Apoptose untersucht. Eine Fehlregulation dieser Prozesse ist für experimentelle Modelle sepsisähnlicher Entzündung, Neuroinflammation und metabolischen Stresses relevant, in denen Casp12 das Gleichgewicht zwischen inflammatorischen Outputs und Zellüberleben beeinflussen kann.
caspase-12 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Casp12-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Casp12 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Casp12-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Casp12-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.