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caspase-1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-419461-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
caspase-1 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-419461-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Mouse-Casp1 kodiert Caspase-1, eine Cysteinprotease, die in Inflammasom-Komplexen wie NLRP3, AIM2 und NLRC4 als Reaktion auf mikrobielle Produkte und zellulären Stress aktiviert wird. Aktive Caspase-1 spaltet Pro-IL-1β und Pro-IL-18 zu reifen Zytokinen und verarbeitet Gasdermin D, wodurch pyroptotischer Zelltod ausgelöst wird und die angeborene Immunerkennung mit der entzündlichen Antwort verknüpft ist. Dieser Signalweg überschneidet sich mit dem NF-κB-Priming, mitochondrialer Dysfunktion, Ionenflüssen und der Signalgebung durch reaktive Sauerstoffspezies und prägt so Immunantworten von Makrophagen und Epithelzellen. Eine fehlregulierte Caspase-1-Aktivität wird in Modellen autoinflammatorischer Erkrankungen, sepsisassoziierter Entzündung, Neuroinflammation und metabolischer Entzündung mitverantwortlich gemacht, wodurch Casp1 einen zentralen Knotenpunkt für mechanistische Studien darstellt.
caspase-1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Casp1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Casp1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Casp1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Casp1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.