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CapZ-α1 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h) | sc-405348 | 20 µg | $397.00 |
CAPZA1 kodiert die Alpha-1-Untereinheit des Aktinfilament-kappenden Proteins CapZ, eines Heterodimers, das an die barbed ends (Plusenden) von F-Aktin bindet und so die Filamentverlängerung, den Umsatz sowie die Architektur von Aktinnetzwerken reguliert. Durch die Kontrolle der Aktindynamik trägt CapZ-α1 zu Prozessen des zytoskelettalen Umbaus bei, die Zellform, Adhäsion und Motilität zugrunde liegen, und es ist mit Signalwegen verknüpft, die mit der Aktinorganisation und der Mechanotransduktion in Zusammenhang stehen. Eine veränderte Regulation der Aktin-Kappung und der damit verbundenen zytoskelettalen Programme wird häufig mit Phänotypen in Verbindung gebracht, die für Tumorzellinvasion, Struktur und Kontraktilität von Kardiomyozyten sowie weitere Kontexte relevant sind, in denen aktinabhängiges Remodeling ein entscheidender Determinant des Zellverhaltens ist.
Das CapZ-α1 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des CAPZA1-Gens in human-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid koexprimiert eine einzigartige Single-Guide-RNA (sgRNA), die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des CAPZA1-Gens abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease. Die Plasmide kodieren zudem für GFP, was die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie ermöglicht.
Das Multi-Guide-Design erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass Insertionen oder Deletionen (Indels) entstehen, die den offenen Leserahmen von CAPZA1 nach der Cas9-vermittelten Bildung von Doppelstrangbrüchen unterbrechen. Durch das CRISPR/Cas9-System verursachte DNA-Brüche werden über endogene NHEJ-Wege (Non-Homologous End Joining) repariert, was häufig zu Frameshift-Mutationen führt, die die CapZ-α1-Proteinexpression aufheben.
Dieses CRISPR-Knockout-System ermöglicht die effiziente Erzeugung von CAPZA1-defizienten Zellmodellen zur Untersuchung der CapZ-α1-Signalübertragung, für funktionelle Genomstudien, in der Krebsbiologieforschung sowie zur Bewertung therapeutischer Reaktionen in menschlichen Zelllinien.
CRISPRs +/- HDRs
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.