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BTEB2 Double Nickase Plasmid (m) | sc-419372-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
BTEB2 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-419372-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das murine Klf5 codiert den Transkriptionsfaktor BTEB2 (Krüppel-like factor 5), ein Zinkfinger-DNA-bindendes Protein, das Proliferations- und Differenzierungsprogramme in epithelialen und mesenchymalen Zelllinien reguliert. BTEB2 integriert Signale aus den MAPK/ERK-, Wnt/β-Catenin-, TGF-β- und PI3K/AKT-Signalwegen, um Zellzyklusprogression, Migration und Remodelling der extrazellulären Matrix zu steuern. Während Entwicklung und Gewebehomöostase beeinflusst die Klf5-Aktivität über kontextabhängige transkriptionelle Netzwerke die Dynamik der intestinalen Krypten, vaskuläre und glatte Muskelzell-Phänotypen sowie barrierebildende Epithelien. Eine fehlregulierte Klf5/BTEB2-Expression wurde mit entzündlichem Remodelling, Fibrose und onkogenen transkriptionellen Zuständen in Verbindung gebracht und macht Klf5 zu einem geeigneten Knotenpunkt für mechanistische Studien zur Wachstumskontrolle und Linienplastizität.
BTEB2 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Klf5-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Klf5 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Klf5-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Klf5-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.