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BTEB2 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401680-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
BTEB2 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401680-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
KLF5, auch bekannt als BTEB2, kodiert einen Krüppel-ähnlichen Zinkfinger-Transkriptionsfaktor, der an GC-reiche Promotorelemente bindet, um Programme zu regulieren, die den Zellzyklus, die Differenzierung und die Homöostase des Epithels steuern. BTEB2 integriert Signale aus mitogenen und stressantwortenden Signalwegen, darunter MAPK/ERK und PI3K/AKT, und moduliert Transkriptionsnetzwerke, die mit Proliferation und Überleben verknüpft sind. Zudem ist es an der Gewebeumgestaltung beteiligt, indem es die Expression von Genen der extrazellulären Matrix und von Entzündungsgenen beeinflusst und so Zellzustandsübergänge in Entwicklung und Reparatur prägt. Eine dysregulierte KLF5-Aktivität wurde in mehreren Krankheitskontexten mit veränderter Wachstumskontrolle und Linienplastizität in Verbindung gebracht, was es zu einem nützlichen Knotenpunkt für mechanistische Studien zur Transkriptionsregulation und zum Crosstalk zwischen Signalwegen macht.
BTEB2 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des KLF5-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von KLF5 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die KLF5-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit KLF5-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.