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BF-1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-402933-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
BF-1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-402933-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
FOXG1 kodiert den Forkhead-Box-Transkriptionsfaktor BF-1, einen zentralen Regulator der Musterbildung des Telencephalons, der Proliferation neuronaler Vorläuferzellen und des zeitlichen Ablaufs der Differenzierung während der menschlichen Gehirnentwicklung. BF-1 prägt Genexpressionsprogramme, die über transkriptionelle Repression bzw. Aktivierung die Neurogenese und regionale Identität beeinflussen, mit nachgelagerten Effekten auf die Zellzykluskontrolle und Signalwege der Lineage-Festlegung. Eine Störung der FOXG1-Dosierung oder -Funktion ist eng mit neuroentwicklungsbedingten Phänotypen verknüpft, darunter das FOXG1-Syndrom sowie breitere Ausprägungen aus dem Autismus-Spektrum und epileptische Enzephalopathien. In zellulären Modellen wird die Perturbation von FOXG1 genutzt, um die Kompetenz kortikaler Vorläuferzellen, die neuronale Reifung und Phänotypen der Netzwerkaktivität zu untersuchen, die für Entwicklungsstörungen relevant sind.
BF-1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des FOXG1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von FOXG1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die FOXG1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit FOXG1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.