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beta-catenin Double Nickase Plasmid (m) | sc-419477-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
beta-catenin Double Nickase Plasmid (m2) | sc-419477-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das murine Gen **Ctnnb1** kodiert **β‑Catenin**, ein multifunktionales Armadillo‑Repeat‑Protein, das cadherinbasierte Adherens Junctions mit dem Aktin-Zytoskelett koppelt und die Zell‑Zell‑Adhäsion sowie die Gewebearchitektur reguliert. In der kanonischen **Wnt‑Signalübertragung** akkumuliert stabilisiertes β‑Catenin im Zytoplasma und transloziert in den Zellkern, wo es mit **TCF/LEF‑Transkriptionsfaktoren** zusammenwirkt und Programme koordiniert, die Proliferation, Differenzierung und die Erhaltung von Stammzellen steuern. Die Aktivität von β‑Catenin wird durch den **Destruktionskomplex** (u. a. APC, AXIN und GSK3) moduliert, der Signale aus Entwicklungsreizen und stressresponsiven Signalwegen integriert. Eine Fehlregulation der β‑Catenin‑Signalgebung oder seiner Adhäsionsfunktionen ist an onkogener Transformation, Entwicklungsdefekten und entzündlichen Pathologien beteiligt, wodurch **Ctnnb1** einen zentralen Knotenpunkt für mechanistische Studien darstellt.
beta-catenin Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Ctnnb1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Ctnnb1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Ctnnb1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Ctnnb1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.