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ARID1A Double Nickase Plasmid (h) | sc-400469-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
ARID1A Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400469-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ARID1A (AT-rich interaction domain 1A) kodiert eine zentrale Untereinheit des ATP-abhängigen Chromatin-Remodelling-Komplexes SWI/SNF (BAF), der durch Modulation der Nukleosomenpositionierung Transkriptionsprogramme reguliert. Über die Kontrolle der Chromatinzugänglichkeit beeinflusst ARID1A die Enhancer-Aktivität, die Expression von die Zelllinie festlegenden Genen, DNA-Schadensantworten sowie replikationsassoziierte Prozesse, die den Zellzyklusverlauf und die Genomstabilität prägen. Die ARID1A-Funktion überschneidet sich mit Signalwegen der epigenetischen Regulation und der stressresponsiven Transkription, einschließlich Crosstalk mit der PI3K/AKT-Signalkaskade und p53-assoziierten Netzwerken. Veränderungen in ARID1A werden bei vielen menschlichen Krebserkrankungen häufig beobachtet und aufgrund ihrer Auswirkungen auf den Chromatinzustand, transkriptionelle Fehlregulation und die Tumorsuppressor-Biologie umfassend untersucht.
ARID1A Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ARID1A-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ARID1A abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ARID1A-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ARID1A-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.