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Apelin Double Nickase Plasmid (h) | sc-401548-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Apelin Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401548-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das humane Gen **APLN** kodiert Apelin, einen sezernierten peptidischen Liganden für den G‑Protein‑gekoppelten Rezeptor **APJ/APLNR**, der den Gefäßtonus, angiogene Signalwege, die kardiale Kontraktilität und die Flüssigkeitshomöostase reguliert. Die Bindung von Apelin an APJ aktiviert nachgeschaltete Signalwege wie **PI3K/AKT**, **ERK/MAPK** sowie **eNOS/NO** und beeinflusst dadurch die Migration von Endothelzellen, die Reaktionsfähigkeit glatter Muskelzellen und den metabolischen Crosstalk in Fett- und Skelettmuskelgewebe. Eine dysregulierte Apelin-Signalgebung wird mit kardiovaskulärem Remodeling, pulmonalen Gefäßerkrankungen und metabolischen Dysfunktionen in Verbindung gebracht, wodurch APLN einen nützlichen Knotenpunkt zur Untersuchung der Peptid‑GPCR‑Kommunikation unter Stress und Entzündung darstellt. In der Tumorbiologie kann Apelin hypoxieadaptive Programme und die Dynamik vaskulärer Nischen beeinflussen und damit mechanistische Studien zur Signalgebung im Mikromilieu unterstützen, ohne einen klinischen Nutzen zu implizieren.
Apelin Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des APLN-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von APLN abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die APLN-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit APLN-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.