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ANKS6 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-406150-ACT | 20 µg | $397.00 |
ANKS6 (ankyrin repeat and sterile alpha motif domain containing 6) kodiert ein gerüstähnliches Protein, das an der Biologie des primären Ziliums sowie an centrosomenassoziierten Prozessen beteiligt ist, welche die epitheliale Polarität und die Gewebemorphogenese koordinieren. Es wurde mit Mechanismen von Nephronophthise-assoziierten Ziliopathien in Verbindung gebracht, einschließlich der Regulation ziliärer Signalwege, die Entwicklungsreize und mechanosensorische Inputs integrieren. ANKS6 ist über Ankyrin-Repeats und eine durch die SAM-Domäne vermittelte Assemblierung in Protein-Protein-Interaktionsnetzwerke eingebunden und unterstützt damit Untersuchungen zu ziliärem Transport, Zellzykluskoordination und planarer Zellpolarität. Eine Fehlregulation oder ein Funktionsverlust von ANKS6 ist mit renalen Entwicklungsstörungen und zystischen Nierenphänotypen assoziiert und ist daher relevant für Studien zu Ziliopathien und zur Biologie von Nierenerkrankungen.
ANKS6 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen ANKS6-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
ANKS6 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des ANKS6-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der ANKS6-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen ANKS6-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native ANKS6-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von ANKS6-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des ANKS6-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem ANKS6-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.