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Amphiphysin I CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403904-ACT | 20 µg | $397.00 |
AMPH kodiert Amphiphysin I, einen endozytotischen Adapter mit BAR-Domäne, der Membrankrümmung erkennt und induziert und die clathrinvermittelte Endozytose koordiniert. Es interagiert mit Dynamin und anderen SH3-Domänen-Partnern, um das Recycling synaptischer Vesikel, den Membrantransport und aktinassoziierte Umbauprozesse an präsynaptischen Endigungen zu regulieren. Über seine Rolle bei der Vesikelknospung und dem Recycling trägt Amphiphysin I zur Homöostase neuronaler Signalübertragung bei und wird häufig in Signalwegen untersucht, die die synaptische Transmission und die Endosomendynamik steuern. Eine veränderte AMPH-Expression oder -Funktion wurde im Kontext der Neurobiologie und neurodegenerativer Krankheitsmechanismen untersucht, bei denen Defekte im Transport und in der Aufrechterhaltung synaptischer Strukturen eine wichtige Rolle spielen.
Amphiphysin I Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen AMPH-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Amphiphysin I Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des AMPH-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der AMPH-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Amphiphysin I-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native AMPH-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Amphiphysin I-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Amphiphysin I-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem AMPH-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.