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alpha 1 Sodium Potassium ATPase/ATP1A1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400239-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
alpha 1 Sodium Potassium ATPase/ATP1A1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400239-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ATP1A1 kodiert die katalytische α1‑Untereinheit der Na⁺/K⁺‑ATPase, einer essenziellen P‑Typ‑ATPase, die durch ATP‑Hydrolyse Na⁺ aus der Zelle exportiert und K⁺ über die Plasmamembran in die Zelle importiert. Durch die Aufrechterhaltung ionischer Gradienten unterstützt ATP1A1 das Ruhemembranpotenzial, die Kontrolle des Zellvolumens, den sekundär aktiven Transport sowie die Erregbarkeit und beeinflusst Signalwege, die mit Zelladhäsion, Zytoskelettorganisation und Stressantworten verknüpft sind. Die Aktivität der α1‑Na⁺/K⁺‑ATPase ist zentral für die Physiologie von Epithel- und Nervenzellen und trägt zu Programmen der Ionenhomöostase bei, die den metabolischen Bedarf und die Ca²⁺‑Handhabung mitbestimmen. Eine fehlregulierte Funktion oder Expression von ATP1A1 wurde in krankheitsrelevanten Kontexten mit veränderter Erregbarkeit und Transportphänotypen in Verbindung gebracht, wodurch es sich als geeigneter Knotenpunkt für die Untersuchung der Membranphysiologie und des Signalweg‑Cross‑Talks anbietet.
alpha 1 Sodium Potassium ATPase/ATP1A1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ATP1A1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ATP1A1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ATP1A1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ATP1A1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.