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ALAS-E Double Nickase Plasmid (h) | sc-403752-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
ALAS-E Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403752-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das menschliche Gen **ALAS2** kodiert die 5‑Aminolävulinat‑Synthase 2 (ALAS‑E), das erythroide, mitochondriale und geschwindigkeitsbestimmende Enzym der Hämbiosynthese, das die Bildung von 5‑Aminolävulinsäure aus Glycin und Succinyl‑CoA katalysiert. Durch die Steuerung der Hämverfügbarkeit unterstützt ALAS‑E die Hämoglobinisierung während der erythroiden Differenzierung und ist mit dem mitochondrialen Stoffwechsel, dem Eisenhaushalt und der Globinassemblierung verknüpft. Eine fehlregulierte ALAS2‑Aktivität stört die Porphyrin/Häm‑Homöostase und wird mit erythroiden Erkrankungen in Verbindung gebracht, die durch eine fehlerhafte Hämproduktion oder eine abnorme Porphyrinakkumulation gekennzeichnet sind, darunter die sideroblastische Anämie und die erythropoetische Protoporphyrie. ALAS2 ist daher ein nützlicher Knotenpunkt, um die mitochondriale Erythropoese, die Kopplung von Eisen und Häm sowie Stressantworten in sich entwickelnden roten Blutkörperchen zu untersuchen.
ALAS-E Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ALAS2-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ALAS2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ALAS2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ALAS2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.