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53BP1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400321-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
53BP1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400321-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
TP53BP1 kodiert 53BP1, einen chromatinassoziierten Faktor der DNA-Schadensantwort, der sich an Doppelstrangbrüchen anreichert, indem er Histonmarkierungen erkennt und mit upstream gelegenen Sensoren wie ATM zusammenwirkt. 53BP1 fördert das nicht-homologe End-Joining (NHEJ) und begrenzt die Resection der DNA-Enden, wodurch es die Wahl des Reparaturwegs im Gegensatz zur BRCA1-abhängigen homologen Rekombination beeinflusst. Über diese Aktivitäten unterstützt es die Genomstabilität, den Verlauf der S-Phase und die Checkpoint-Signalgebung; eine Fehlregulation wird mit der Mutationslast und chromosomalen Umlagerungen in verschiedenen Krebszusammenhängen in Verbindung gebracht. TP53BP1 wird außerdem häufig als funktioneller Readout für die Bildung von DNA-Schadensfoci und die Reparaturkompetenz in Studien zu Replikationsstress und genotoxischen Antworten verwendet.
53BP1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des TP53BP1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von TP53BP1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die TP53BP1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit TP53BP1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.