非 CRISPR 数据：图片说明了可视化 CRISPR 实验结果的抗体质量。
非 CRISPR 数据：图片说明了可视化 CRISPR 实验结果的抗体质量。
14-3-3 ηCRISPR激活质粒(m): sc-423749-ACT
- 针对种属：mouse
- 20 µg 纯化的即用型的质粒DNA，最多可供20次转染
- 14-3-3 η CRISPER激活质粒（m）是一种协同激活介质（SAM）转录激活系统，目的在于特定上调基因表达
- 14-3-3 η CRISPR 激活质粒 (m)包含三种质量比为1:1:1的质粒：一种质粒编码与转录激活结构域VP64融合的去活化的Cas9 (dCas9)核酸酶(D10A and N863A)，和杀稻瘟素抗性基因；一种质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白，和潮霉素抗性基因；一种质粒编码与两个MS2 RNA适体融合的目标特异的20 nt向导RNA，和嘌呤霉素抗性基因。
- 形成的SAM复合物结合到转录起始位点上游大约200-250 nt的特定位点区域，为高效激活基因提供转录因子的招募
- 由 14-3-3 η CRISPR 激活质粒 (m) 和 14-3-3 η CRISPR 激活质粒 (m2) 编码的 gRNA 分别针对 Ywhah 转录起始位点上游的不同调控区域。其中一种或两种设计可能可用
- 转染后，基因敲除效率可以用抗体：14-3-3 η: sc-293464，通过WB, IF或者IHC分析
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| 产品名称 | 产品编号 | 规格 | 价格 | 数量 | 收藏夹 | |
14-3-3 ηCRISPR激活质粒(m) | sc-423749-ACT | 20 µg | $397.00 |
小鼠基因 **Ywhah** 编码 14-3-3η 适配蛋白。该蛋白属于 14-3-3 蛋白家族，能够识别磷酸化丝氨酸/磷酸化苏氨酸基序，从而调控多种信号蛋白的定位、稳定性与活性。通过与激酶、磷酸酶及转录调控因子结合，14-3-3η 参与对细胞周期推进、应激反应与细胞凋亡的磷酸化依赖性调控，并整合 MAPK、PI3K/AKT 等通路下游的信号传导。在神经与免疫系统中，14-3-3 蛋白有助于协调突触功能、细胞骨架动态以及炎症信号，使 Ywhah 成为在小鼠模型中研究蛋白稳态与信号转导的有用节点。14-3-3 介导的相互作用失调与神经退行性变、致癌信号以及自身免疫相关机制有关，因此也支持其用于通路导向的疾病生物学研究。
14-3-3 η CRISPR激活质粒（m）提供了一种靶向、非破坏性的方法，可在不改变底层DNA序列的情况下上调内源性Ywhah的表达。
14-3-3 η CRISPR激活质粒（m）是一个由三条质粒组成的协同激活介导（SAM）系统，旨在对人类细胞系中的Ywhah基因座进行高效、位点特异性的转录上调。该系统以一种携带两个失活突变（D10A 和 N863A）的无催化活性的 Cas9（dCas9）为核心，这些突变消除了核酸酶活性，同时保留了 DNA 结合能力。该 dCas9 与强效转录激活因子 VP64 融合，并与用于筛选的布拉西定抗性基因共同表达。第二个质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白——这一二级激活复合物与dCas9-VP64协同作用，并携带潮霉素抗性基因。第三个质粒编码靶标特异性20 nt sgRNA，其与两个MS2 RNA适配体融合，这些适配体可将MS2-p65-HSF1复合物招募至激活位点，并携带嘌呤霉素抗性基因。这三个质粒按1:1:1的质量比递送，以确保系统所有组分的平衡表达。
在靶位点组装完成后，SAM复合物结合于Ywhah转录起始位点上游约200 bp处，VP64、p65和HSF1在此协同作用，招募转录 machinery并驱动内源性14-3-3 η表达上调。与具有核酸酶活性的Cas9不同， dCas9不会引入双链断裂或修改基因组序列，从而保留了原生的Ywhah位点，并能够研究内源性位点上依赖于14-3-3 η的转录反应，使其成为功能研究、靶基因鉴定以及在Ywhah表达被沉默或降低的肿瘤细胞中模拟14-3-3 η通路恢复的宝贵工具。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。