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MON1B CRISPR/Cas9 KO质粒 (h) | sc-411626 | 20 µg | $397.00 | |||
MON1B HDR 质粒 (h) | sc-411626-HDR | 20 µg | $445.00 |
MON1B 编码一种在进化上保守的内体成熟调控因子,参与膜运输以及内体-溶酶体通路的调控。它与 Rab5 向 Rab7 的转换过程相关,这一转换促使早期内体向晚期内体转变,从而支持货物分选、受体周转以及依赖溶酶体的降解。通过在囊泡系留(tethering)及 Rab GTP 酶调控中的作用,MON1B 影响自噬-溶酶体通量、营养信号传导和膜稳态等过程。涉及 MON1B 的内体运输通路发生失调,已被认为与蛋白质稳态改变及细胞应激反应异常有关,这些变化与神经退行性变、感染生物学以及癌细胞信号传导等领域相关。
MON1B CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)是一组质粒池,旨在针对性地破坏human细胞系中的MON1B基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对MON1B基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,MON1B HDR质粒(h)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定MON1B靶位点的同源臂包围。
与 MON1B CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在MON1B 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。