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Fibrinogen γ Double Nickase Plasmid (m) | sc-430271-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Fibrinogen γ Double Nickase Plasmid (m2) | sc-430271-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Fgg kodiert die Fibrinogen-γ-Kette, eine zentrale Komponente des Fibrinogen-Hexamers, der in den terminalen Schritten der Gerinnungskaskade proteolytisch zu Fibrin umgewandelt wird. Fibrinogen γ trägt zur Fibrinpolymerisation, zur Gerinnselarchitektur sowie zu Interaktionen mit Thrombozyten- und Leukozytenrezeptoren bei, die die Hämostase mit inflammatorischer Signalgebung verknüpfen. In der Maus wird eine Störung von Fgg genutzt, um die thrombingetriebene Fibrinbildung, den Umbau der extrazellulären Matrix während der Wundheilung und das Crosstalk zwischen Gerinnungswegen und angeborenen Immunantworten zu untersuchen. Eine veränderte Funktion oder Expression von Fibrinogen γ ist relevant für experimentelle Modelle von Blutungen oder Thrombosen, Gefäßverletzungen und entzündlichen Gewebeschäden, bei denen Fibrinablagerungen die Pathologie beeinflussen.
Fibrinogen γ Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Fgg-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Fgg abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Fgg-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Fgg-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.