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ANO6 CRISPR/Cas9 KO质粒 (h) | sc-402736 | 20 µg | $397.00 | |||
ANO6 HDR 质粒 (h) | sc-402736-HDR | 20 µg | $445.00 |
ANO6(亦称 TMEM16F)编码一种由 Ca2+ 激活的磷脂“扰乱酶”(scramblase)和离子通道,调控磷脂酰丝氨酸在质膜两侧的双向转位。通过 Ca2+ 依赖的膜重塑,ANO6 参与血小板促凝活性、凋亡细胞清除信号,以及对膜运输和细胞表面脂质组成的更广泛调控。该蛋白与 Ca2+ 信号及磷脂稳态通路相互衔接,从而影响细胞黏附、炎症反应和囊泡动力学。ANO6 活性失调与出血及血小板功能障碍有关,并且在膜脂不对称性发生改变的背景下,也常被用于研究肿瘤生物学、免疫调控和神经退行性过程。
ANO6 CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)是一组质粒池,旨在针对性地破坏human细胞系中的ANO6基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对ANO6基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,ANO6 HDR质粒(h)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定ANO6靶位点的同源臂包围。
与 ANO6 CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在ANO6 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。