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Smad5 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-421528 | 20 µg | $397.00 | |||
Smad5 HDR 质粒 (m) | sc-421528-HDR | 20 µg | $445.00 |
Smad5 编码一种 R‑SMAD 转录因子,可在 ALK1/ALK2/ALK3/ALK6 等 I 型受体下游传递骨形态发生蛋白(BMP)信号。其 C 端被磷酸化后,SMAD5 与 SMAD4 形成复合物并在细胞核内富集,从而调控控制胚胎模式形成、血管生成、成骨以及造血分化等过程的基因程序。SMAD5 的活性与 TGF‑β/BMP 通路之间的串扰相整合,并与谱系特异性转录因子协同作用,以塑造细胞命运决定及细胞外基质重塑。SMAD5 信号失调与血管发育和骨形成缺陷相关,并常被用于在小鼠中建立模型,以研究与先天畸形及肿瘤相关微环境变化有关的 BMP 驱动机制。
Smad5 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Smad5基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Smad5基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,Smad5 HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Smad5靶位点的同源臂包围。
与 Smad5 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Smad5 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。