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RAI1 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-422591 | 20 µg | $397.00 | |||
RAI1 HDR 质粒 (m) | sc-422591-HDR | 20 µg | $445.00 |
Rai1 编码视黄酸诱导蛋白 1(retinoic acid induced 1,RAI1),是一种与染色质相关的调控蛋白,参与神经元基因程序的转录控制以及依赖神经活动的信号传导。RAI1 通过影响启动子与增强子的功能参与表观遗传调控,将上游发育线索与下游通路连接起来,这些通路共同调节神经发育、昼夜节律以及代谢稳态。Rai1 的剂量或功能发生改变与神经行为表型及综合征性发育障碍相关,因此它是用于建立神经系统基因剂量敏感性模型的重要靶点。在小鼠体系中,对 Rai1 的扰动常用于研究转录网络稳定性、神经元分化以及应激响应基因表达。
RAI1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Rai1基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Rai1基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,RAI1 HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Rai1靶位点的同源臂包围。
与 RAI1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Rai1 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。