KV1.5 CRISPR Activation Plasmid (h): sc-404341-ACT

KCNA5 kodiert den humanen spannungsabhängigen Kaliumkanal KV1.5, eine Shaker-verwandte α‑Untereinheit, die den ultraraschen verzögerten Gleichrichterstrom leitet und zur Kontrolle der Membranrepolarisierung und Erregbarkeit beiträgt. Die KV1.5‑Aktivität prägt die Dauer des Aktionspotenzials, die Feuerungsfrequenz und kalziumgekoppelte Signalwege, indem sie das Ruhemembranpotenzial und das Refraktärverhalten in erregbaren und nicht erregbaren Zellen fein abstimmt. Aufgrund seines Beitrags zur elektrophysiologischen Homöostase wird KCNA5 häufig in Signalwegen untersucht, die Ionenfluss mit Transkriptionsprogrammen, metabolischem Bedarf und Stressantworten verknüpfen. Eine dysregulierte KCNA5/KV1.5‑Expression oder -Funktion wurde mit kardialen Rhythmusphänotypen, Remodeling der vaskulären glatten Muskulatur und veränderter proliferativer Signalübertragung in Verbindung gebracht, was seine Relevanz für mechanistische Modelle von Kanalopathien unterstreicht.

KV1.5 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen KCNA5-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.

KV1.5 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des KCNA5-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.

Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der KCNA5-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen KV1.5-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native KCNA5-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von KV1.5-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des KV1.5-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem KCNA5-Ausdruck.

Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.