Glucosidase ICRISPR激活质粒(h): sc-405014-ACT
- 针对种属：human
- 20 µg 纯化的即用型的质粒DNA，最多可供20次转染
- Glucosidase I CRISPER激活质粒（h）是一种协同激活介质（SAM）转录激活系统，目的在于特定上调基因表达
- Glucosidase I CRISPR 激活质粒 (h)包含三种质量比为1:1:1的质粒：一种质粒编码与转录激活结构域VP64融合的去活化的Cas9 (dCas9)核酸酶(D10A and N863A)，和杀稻瘟素抗性基因；一种质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白，和潮霉素抗性基因；一种质粒编码与两个MS2 RNA适体融合的目标特异的20 nt向导RNA，和嘌呤霉素抗性基因。
- 形成的SAM复合物结合到转录起始位点上游大约200-250 nt的特定位点区域，为高效激活基因提供转录因子的招募
- 由 Glucosidase I CRISPR 激活质粒 (h) 和 Glucosidase I CRISPR 激活质粒 (h2) 编码的 gRNA 分别针对 MOGS 转录起始位点上游的不同调控区域。其中一种或两种设计可能可用
- 转染后，基因敲除效率可以用抗体：Glucosidase I: sc-374006，通过WB, IF或者IHC分析
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Glucosidase ICRISPR激活质粒(h) | sc-405014-ACT | 20 µg | $397.00 |
MOGS 编码葡萄糖苷酶 I（glucosidase I），这是一种定位于内质网（ER）的 α-葡萄糖苷酶，负责催化新生糖蛋白上 N-连接型糖链加工过程中“首次葡萄糖修剪”的步骤。该活性是内质网质量控制的核心环节，影响由 calnexin/calreticulin 伴侣系统辅助的折叠、分泌能力，以及错误折叠蛋白的内质网相关降解（ERAD）。通过塑造糖蛋白的成熟过程，MOGS 进而影响蛋白稳态（proteostasis）以及细胞对内质网应激和未折叠蛋白反应（UPR）的应答。MOGS 功能异常与先天性糖基化缺陷病（congenital disorders of glycosylation）有关；此外，它还能通过影响病毒包膜糖蛋白的加工来调节宿主—病原体相互作用，因此在糖生物学与感染相关研究中具有重要意义。
Glucosidase I CRISPR激活质粒（h）提供了一种靶向、非破坏性的方法，可在不改变底层DNA序列的情况下上调内源性MOGS的表达。
Glucosidase I CRISPR激活质粒（h）是一个由三条质粒组成的协同激活介导（SAM）系统，旨在对人类细胞系中的MOGS基因座进行高效、位点特异性的转录上调。该系统以一种携带两个失活突变（D10A 和 N863A）的无催化活性的 Cas9（dCas9）为核心，这些突变消除了核酸酶活性，同时保留了 DNA 结合能力。该 dCas9 与强效转录激活因子 VP64 融合，并与用于筛选的布拉西定抗性基因共同表达。第二个质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白——这一二级激活复合物与dCas9-VP64协同作用，并携带潮霉素抗性基因。第三个质粒编码靶标特异性20 nt sgRNA，其与两个MS2 RNA适配体融合，这些适配体可将MS2-p65-HSF1复合物招募至激活位点，并携带嘌呤霉素抗性基因。这三个质粒按1:1:1的质量比递送，以确保系统所有组分的平衡表达。
在靶位点组装完成后，SAM复合物结合于MOGS转录起始位点上游约200 bp处，VP64、p65和HSF1在此协同作用，招募转录 machinery并驱动内源性Glucosidase I表达上调。与具有核酸酶活性的Cas9不同， dCas9不会引入双链断裂或修改基因组序列，从而保留了原生的MOGS位点，并能够研究内源性位点上依赖于Glucosidase I的转录反应，使其成为功能研究、靶基因鉴定以及在MOGS表达被沉默或降低的肿瘤细胞中模拟Glucosidase I通路恢复的宝贵工具。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。