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CYP11B1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-403040-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CYP11B1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403040-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CYP11B1 kodiert ein mitochondriales Cytochrom‑P450‑Enzym, das 11β‑Hydroxylierungsschritte katalysiert, die für die Biosynthese von Cortisol und Corticosteron in der Nebennierenrinde essenziell sind. Als Bestandteil des Steroidogenesewegs wirkt CYP11B1 nachgeschaltet von der Cholesterinmobilisierung und den mitochondrialen Elektronentransfersystemen und integriert die durch ACTH regulierte Steuerung der Glukokortikoidproduktion. Eine veränderte CYP11B1‑Aktivität stört die Glukokortikoidhomöostase und den Steroidfluss in der Nebenniere, was für Erkrankungen relevant ist, die durch eine abnorme Cortisolproduktion und kompensatorische Veränderungen in Mineralokortikoid‑ und Androgenwegen gekennzeichnet sind. CYP11B1 wird daher häufig in Nebennierenzellmodellen untersucht, um Steroidogenese, mitochondriale P450‑Katalyse und die endokrine Stressantwort‑Signalgebung zu erforschen.
CYP11B1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CYP11B1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CYP11B1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CYP11B1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CYP11B1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.