Not CRISPR data: the image illustrates antibody quality for visualizing CRISPR experiment results.
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SDF-1/CXCL12 Double Nickase Plasmid (h): sc-400268-NIC
- Zielspezies: human
- 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
- Das SDF-1/CXCL12 Double Nickase Plasmid (h) wird als Plasmid-Paar geliefert. Die einzelnen Plasmide kodieren für eine D10A mutierte Cas9 Nuklease sowie für je eine unterschiedliche, zielspezifische 20nt guide RNA (gRNA) Sequenz. Dies erlaubt eine hohe Knockout-Effizienz bei gleichzeitig größerer Spezifität als das entsprechende CRISPR/Cas9 KO Plasmid
- gRNA Sequenzpaare liegen ca. 20 bp auseinander um ein spezifisches Cas9-vermitteltes "Double Nicking" der genomischen DNA zu erlauben und so im Resultat den Effekt eines Doppelstrangbruchs nachzuahmen.
- Ein Plasmid kodiert für ein Puromycin-Resistenzgen zur Selektion von stabilen Knockout-Zellen. Das andere Plasmid kodiert für ein GFP-Gen für den visuellen Nachweis der Transfektion
- SDF-1/CXCL12 Double-Nickase-Plasmid (h) und SDF-1/CXCL12 Double-Nickase-Plasmid (h2) kodieren unterschiedliche gepaarte gRNA-Designs, die auf CXCL12 abzielen. Möglicherweise ist eines oder sind beide Designs verfügbar
- Nach der Transfektion kann die Effizienz des Gen-Knockouts per Western Blot oder histologisch mit folgendem Antikörper überprüft werden: SDF-1/CXCL12: sc-74271
Bestellinformation
| Produkt | Katalog # | EINHEIT | Preis | ANZAHL | Favoriten | |
SDF-1/CXCL12 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400268-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
SDF-1/CXCL12 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400268-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CXCL12 (SDF-1/CXCL12) ist ein homöostatisches Chemokin, das durch Signalübertragung vor allem über CXCR4 und CXCR7/ACKR3 richtungsweisende Hinweise für Zellmigration und Gewebeorganisation bereitstellt. Seine Gradienten steuern die Leukozytenwanderung, die Retention hämatopoetischer Stamm- und Vorläuferzellen in Knochenmarknischen sowie das Zusammenspiel von Gefäß- und Stromazellen während Entwicklung und Reparatur. Nachgeschaltete Signalwege umfassen häufig PI3K–AKT, MAPK/ERK, JAK/STAT und Rho-GTPase-Kaskaden, um Chemotaxis, Überleben und Adhäsion zu koordinieren. Eine fehlregulierte Aktivität der CXCL12-Achse wird mit Mechanismen entzündlicher Erkrankungen und der Biologie des Tumormikromilieus in Verbindung gebracht, einschließlich Mustern der Immunzellinfiltration und der Bildung metastatischer Nischen, weshalb sie häufig Ziel mechanistischer Studien ist.
SDF-1/CXCL12 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CXCL12-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CXCL12 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CXCL12-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CXCL12-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.