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Rsk-2 Plasmide di attivazione CRISPR (h) | sc-401003-ACT | 20 µg | $397.00 |
RPS6KA3 codifica la chinasi ribosomiale S6 A3 (Rsk-2), una chinasi serina/treonina che agisce a valle di ERK1/2 nella cascata di segnalazione MAPK per collegare gli stimoli extracellulari al controllo trascrizionale e traduzionale. Rsk-2 fosforila substrati nucleari e citoplasmatici implicati nella progressione del ciclo cellulare, nella differenziazione e nell’espressione genica in risposta allo stress, inclusi regolatori della cromatina e dei programmi trascrizionali “immediate-early”. Attraverso queste attività, Rsk-2 contribuisce alla segnalazione dipendente dai fattori di crescita, alla regolazione di feedback all’interno delle vie MAPK e alla modulazione della sintesi proteica. La disregolazione della segnalazione RPS6KA3/Rsk-2 è stata associata a fenotipi di neurosviluppo e cognitivi ed è anche rilevante per la ricerca su programmi aberranti di proliferazione e sopravvivenza guidati da MAPK.
Rsk-2 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di RPS6KA3 senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
Rsk-2 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus RPS6KA3 nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione RPS6KA3, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di Rsk-2. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus RPS6KA3 nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da Rsk-2 nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via Rsk-2 nelle cellule tumorali con espressione di RPS6KA3 silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.