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LC3B CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-417828-ACT | 20 µg | $397.00 |
MAP1LC3B kodiert das mikrotubuliassoziierte Protein 1, Leichtkette 3 beta (LC3B), einen ubiquitinähnlichen Modifikator, der gespalten und lipidiert wird, um auf entstehenden autophagosomalen Membranen LC3-II zu bilden. LC3B dient als zentrales Gerüstprotein der Autophagie, indem es an LIR-Motiv-haltige Cargo-Rezeptoren wie SQSTM1/p62 bindet und dadurch die selektive Sequestrierung von Fracht sowie die Reifung von Autophagosomen innerhalb des lysosomalen Abbauwegs koordiniert. Dieses Protein integriert Nährstoff- und Stresssignale, einschließlich der durch MTOR und AMPK regulierten Autophagie-Initiation, und wird routinemäßig zur Überwachung des autophagischen Flusses und der Vesikeldynamik eingesetzt. Eine fehlregulierte, LC3B-assoziierte Autophagie wurde u. a. mit Neurodegeneration, Infektionen und der Stressadaptation von Krebszellen in Verbindung gebracht und unterstützt mechanistische Studien zur Proteostase und zur Qualitätskontrolle von Organellen.
LC3B Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen MAP1LC3B-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
LC3B Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des MAP1LC3B-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der MAP1LC3B-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen LC3B-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native MAP1LC3B-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von LC3B-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des LC3B-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem MAP1LC3B-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.