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SLC25A3 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-404129-ACT | 20 µg | $397.00 |
SLC25A3 kodiert einen Soluttransporter der inneren Mitochondrienmembran, der anorganisches Phosphat in die Matrix transportiert und dadurch die oxidative Phosphorylierung unterstützt, indem er Substrat für die ATP-Synthase bereitstellt. Durch die Kopplung des Phosphatimports an das mitochondriale Membranpotenzial trägt SLC25A3 zur Regulation der zellulären Bioenergetik, des Gleichgewichts reaktiver Sauerstoffspezies und der metabolischen Flexibilität in energieintensiven Geweben bei. Veränderte SLC25A3-Funktion wird mit Phänotypen mitochondrialer Dysfunktion in Verbindung gebracht, die Muskel- und Herzphysiologie betreffen, und ist daher relevant für Studien zu mitochondrialen Myopathien und kardiometabolischen Stressantworten. Dieses Gen eignet sich außerdem, um zu untersuchen, wie die Phosphatverfügbarkeit mit der Aktivität der Atmungskette und apoptosebezogener mitochondrialer Signalgebung zusammenwirkt.
SLC25A3 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen SLC25A3-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
SLC25A3 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des SLC25A3-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der SLC25A3-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen SLC25A3-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native SLC25A3-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von SLC25A3-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des SLC25A3-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem SLC25A3-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.