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Heme Oxygenase 1/HMOX1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-420882-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Heme Oxygenase 1/HMOX1 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-420882-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das murine Gen *Hmox1* kodiert die Hämoxygenase 1 (HMOX1), ein induzierbares, stressresponsives Enzym, das den Abbau von Häm zu Biliverdin, Kohlenmonoxid und zweiwertigem Eisen katalysiert und damit den Hämaturnover mit der Redoxhomöostase verknüpft. HMOX1 wird durch Signalwege des oxidativen und elektrophilen Stresses reguliert, insbesondere über die NRF2–KEAP1-Signalkaskade, und ist in inflammatorische sowie mitochondriale Stressantworten eingebunden. Durch die Modulation reaktiver Sauerstoffspezies, der Eisenhandhabung und zytoprotektiver Transkriptionsprogramme beeinflusst HMOX1 die Polarisierung von Makrophagen, die Endothelfunktion und die Gewebeanpassung an Verletzungen. Eine dysregulierte HMOX1-Aktivität wurde in Modellen von Entzündung, Ischämie-Reperfusionsschaden, metabolischer Dysfunktion, Neurodegeneration und Tumorbiologie beschrieben, was sie zu einem nützlichen Ziel für mechanistische Studien macht.
Heme Oxygenase 1/HMOX1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Hmox1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Hmox1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Hmox1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Hmox1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.