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FGF-8 Double Nickase Plasmid (h) | sc-403127-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
FGF-8 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403127-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
FGF8 kodiert den Fibroblasten-Wachstumsfaktor 8 (FGF‑8), einen sezernierten Signalliganden, der an FGFRs bindet und dadurch die MAPK/ERK-, PI3K–AKT- und PLCγ-Signalwege aktiviert, welche Zellproliferation, Überleben, Migration und Linienfestlegung koordinieren. Er ist ein zentrales Morphogen während der embryonalen Musterbildung, unter anderem bei der Entwicklung des Mittelhirn–Hinterhirn-Grenzbereichs, der kraniofazialen Morphogenese und dem Auswachsen der Extremitätenknospe, und trägt zudem über parakrine Signalgebung zur Gewebehomöostase bei. Eine fehlregulierte FGF8-Expression oder eine Hyperaktivierung des FGFR-Signalwegs wurde in mehreren Tumorkontexten mit veränderten Entwicklungsprogrammen und onkogenen Signalnetzwerken in Verbindung gebracht. Da FGF‑8 in die Signalgebung von Rezeptor-Tyrosinkinasen und nachgeschaltete transkriptionelle Programme eingreift, wird es häufig in Modellen der Differenzierung, epithelial-mesenchymaler Dynamiken und mikroenvironmentgetriebener Wachstumsreize untersucht.
FGF-8 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des FGF8-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von FGF8 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die FGF8-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit FGF8-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.