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Dvl-2/Dishevelled 2/DVL2 Double Nickase Plasmid (m) | sc-420081-NIC | 20 µg | $410.00 |
Das Mausgen *Dvl2* kodiert Dishevelled 2 (DVL2), ein zytoplasmatisches Gerüstprotein, das Wnt-Liganden-Signale von Frizzled-Rezeptoren an nachgeschaltete Effektoren weiterleitet. DVL2 integriert kanonische Wnt/β‑Catenin-Transkriptionsprogramme mit nicht-kanonischen Signalwegen der planaren Zellpolarität (PCP) und des Wnt/Ca²⁺-Signalwegs und beeinflusst dadurch Zellpolarität, zytoskelettales Remodeling, Migration und die Musterbildung während der Entwicklung. Durch die Modulation des Signalweg-Outputs trägt DVL2 zur kontextabhängigen Kontrolle von Proliferation und Differenzierung bei und wird daher in der Gewebemorphogenese und Stammzellbiologie breit untersucht. Eine fehlregulierte Wnt–Dishevelled-Signalgebung wird mit angeborenen Entwicklungsdefekten und krankheitsassoziierter Umverdrahtung von Signalnetzwerken in Verbindung gebracht, was mechanistische Untersuchungen der Signalwegregulation in Mausmodellen stützt.
Dvl-2/Dishevelled 2/DVL2 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Dvl2-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Dvl2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Dvl2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Dvl2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.