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Cdc25A CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400345-ACT | 20 µg | $397.00 |
CDC25A kodiert Cdc25A, eine dualspezifische Phosphatase, die Cyclin-abhängige Kinasen aktiviert, indem sie inhibitorische Phosphate entfernt. Dadurch fördert sie den Übergang von G1 nach S und koordiniert die DNA-Replikation mit der Checkpoint-Kontrolle. Cdc25A integriert Signale aus Signalwegen der DNA-Schadensantwort, einschließlich ATM/ATR–CHK1/CHK2, die seine Stabilität und Aktivität regulieren, um unter genotoxischem Stress den Eintritt in den Zellzyklus zu bremsen. Eine fehlregulierte CDC25A-Expression oder ein gestörter Umsatz kann die Checkpoint-Treue beeinträchtigen, replikativen Stress erhöhen und zur genomischen Instabilität beitragen, wie sie bei proliferativen Erkrankungen beobachtet wird. Daher wird CDC25A in humanen Zellen umfassend im Kontext der Zellzyklusregulation, des Replikationszeitpunkts und der Umgestaltung von Stressantwort-Netzwerken untersucht.
Cdc25A Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen CDC25A-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Cdc25A Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des CDC25A-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der CDC25A-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Cdc25A-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native CDC25A-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Cdc25A-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Cdc25A-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem CDC25A-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.