Date published: 2026-9-6

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calsequestrin 2 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m2): sc-419472-KO-2

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Datenblätter
  • Zielspezies: mouse
  • 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
  • calsequestrin 2 Das CRISPR/Cas9-Knockout (KO)-Plasmid (m2) ist ein Pool von Plasmiden, von denen jedes für die Cas9-Nuklease und eine zielspezifische 20-nt-Guide-RNA (gRNA) kodiert, die für maximale Knockout-Effizienz unter Verwendung von Sequenzen aus der GeCKO v2-Bibliothek entwickelt wurde
  • gRNA-Sequenzen lenken Cas9 so, dass es ortsspezifische Doppelstrangbrüche (DSBs) im calsequestrin 2-Genomlokus induziert, was zu einem Gen-Knockout durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) führt
  • calsequestrin 2 HDR-Plasmid (m2) (sc-419472-HDR-2) wird für die Co-Transfektion mit dem calsequestrin 2 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m2) empfohlen, um die Selektion erfolgreich editierter Zellen durch HDR-vermittelte Integration einer Puromycin-Resistenzkassette und eines RFP-Reportergens zu ermöglichen
  • Das calsequestrin 2 HDR-Plasmid (m2) ist ein Pool von Plasmiden, von denen jedes eine HDR-Matrize (Homology-Directed Repair) enthält, die den gRNA-Zielstellen im calsequestrin 2 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m2) entspricht
  • Jedes HDR-Plasmid enthält zwei ~800 bp lange Homologiearme, die die Puromycin-Resistenz- und RFP-Kassetten flankieren und so konzipiert sind, dass sie an genomische DNA-Sequenzen binden, die die durch Cas9 induzierte Doppelstrangbruchstelle umgeben, und eine präzise HDR-vermittelte Integration ermöglichen
  • Die Puromycin-Resistenz- und RFP-Gene werden von LoxP-Stellen flankiert, was die Entfernung der Selektionsmarker mittels Cre-Rekombinase (Cre-Vektor: sc-418923) nach der Etablierung stabiler Knockout-Zelllinien ermöglicht
  • Nach der Transfektion kann die Effizienz des Gen-Knockouts per Western Blot oder histologisch mit folgendem Antikörper überprüft werden: calsequestrin 2: sc-390999
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    calsequestrin 2 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m2)

    sc-419472-KO-2
    20 µg
    $397.00

    calsequestrin 2 HDR Plasmid (m2)

    sc-419472-HDR-2
    20 µg
    $445.00

    Übersicht

    Casq2 kodiert Calsequestrin 2, ein Ca2+-bindendes Protein mit hoher Kapazität, das im Lumen des sarkoplasmatischen Retikulums quergestreifter Muskulatur lokalisiert ist und dort Ca2+-Speicher für die Erregungs‑Kontraktions‑Kopplung puffert und organisiert. Durch Interaktion mit Ryanodinrezeptor‑Komplexen und luminalen Begleitproteinen trägt Calsequestrin 2 zur Regulation der Ca2+-Freisetzung aus dem SR, der Ca2+-Spark‑Dynamik sowie der Wiederauffüllung bei repetitiver Stimulation bei. Eine veränderte CASQ2‑Funktion stört die intrazelluläre Ca2+-Homöostase und kann abnorme Ca2+-Freisetzungsereignisse begünstigen, die Membranerregbarkeit und Kontraktion beeinflussen. Da die Ca2+-Signalgebung in Muskelzellen Stoffwechsel, mitochondriale Funktion und Stressantworten steuert, ist Casq2 ein nützlicher Ansatzpunkt, um Ca2+-abhängige Signalwege in der Herz‑ und Skelettmuskelphysiologie sowie damit verbundene, arrhythmieassoziierte Phänotypen zu untersuchen.

    calsequestrin 2 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m2) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des Casq2-Gens in mouse-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid im Pool koexprimiert eine einzigartige sgRNA, die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des Casq2-Lokus abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease, und kodiert für GFP, um die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen zu ermöglichen. Diese Multi-Guide-Strategie erhöht die Wahrscheinlichkeit, Frameshifts oder Deletionen zu induzieren, die zu einem funktionellen Knockout führen, und bietet damit eine robustere Alternative zu Single-Guide-Ansätzen. An mehreren Stellen induzierte DSBs werden durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) oder, bei Verwendung mit der enthaltenen HDR-Donor-Matrize, durch homologe Reparatur (HDR) an einer definierten Zielstelle innerhalb des Lokus repariert.

    Bei Verwendung in Verbindung mit dem RFP-exprimierenden HDR-Donor können GFP- und RFP-Fluoreszenz gemeinsam genutzt werden, um transfizierte von editierten Zellpopulationen zu unterscheiden, was die auf Durchflusszytometrie basierenden Sortier- und Klonauswahl-Workflows optimiert.

    Homology-Directed Repair (HDR)-Donor — Puromycin-Kassette mit RFP-Reporter

    Für Anwendungen, die bestätigte, selektierbare Knockout-Klone erfordern, enthält das calsequestrin 2 HDR-Plasmid (m2) ein HDR-Donorkonstrukt mit einer Puromycin-Resistenzkassette (PuroR) und einem Reporter für rotes fluoreszierendes Protein (RFP), flankiert von Homologiearmen, die für eine definierte Casq2 Zielstelle spezifisch sind.
    Bei Co-Transfektion mit dem calsequestrin 2 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m2):

    • Die PuroR-RFP-Kassette integriert sich über HDR an der Cas9-Schnittstelle und unterbricht dabei das Casq2 offene Lesegerüst.
      Die RFP-Fluoreszenz liefert einen unmittelbaren visuellen Hinweis auf eine erfolgreiche Integration und ermöglicht die fluoreszenzbasierte Identifizierung oder Sortierung editierter Zellen vor oder parallel zur Puromycin-Selektion.
      Erfolgreich editierte Zellen werden durch Puromycin-Resistenz bestätigt, was den Aufwand für das Klon-Screening erheblich reduziert.
      Diese Selektionsstrategie eignet sich ideal zur Erzeugung stabiler, klonaler KO-Zelllinien für nachgelagerte Funktionsstudien, Wirkstoffscreenings oder die Modellentwicklung.

    Cre-lox-Kassetten-Entfernungssystem

    Das HDR-Donorkonstrukt verfügt über loxP-Stellen, die die PuroR-RFP-Selektionskassette flankieren, um eine saubere Markerentfernung nach der Klonbestätigung zu ermöglichen. Die transiente Expression der Cre-Rekombinase über das enthaltene Cre-Vektor: sc-418923 schneidet die Kassette heraus, wobei eine minimale Rest-loxP-Stelle innerhalb des Casq2-Lokus verbleibt und potenzielle Störeffekte auf nachgeschaltete Assays eliminiert werden.
    Dieser zweistufige Ansatz:

    • Minimiert Störungen der lokalen Chromatinarchitektur und benachbarter regulatorischer Elemente
      Stellt einen nahezu nativen genomischen Kontext am editierten Locus wieder her
      Ermöglicht die Wiederverwendung der Puromycin-Selektionsstrategie in derselben Zelllinie für weitere Editierungen

    Hauptmerkmale

    • gRNA, die auf Casq2 Exon(e) abzielt, die für die calsequestrin 2 Funktion entscheidend sind
      Koexpression von SpCas9 und sgRNA aus einem einzigen Plasmid für eine vereinfachte Verabreichung
      HDR-Donor mit Puromycin-Resistenz für die positive Klonselektion
      loxP-flankierte PuroR-Kassette mit Cre-Rekombinase-Vektor für die nahtlose Markerentfernung
      Wird gebrauchsfertig für die Verabreichung durch Transfektion geliefert

    Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.