PP2A-B55-δCRISPR激活质粒(h): sc-404806-ACT
- 针对种属：human
- 20 µg 纯化的即用型的质粒DNA，最多可供20次转染
- PP2A-B55-δ CRISPER激活质粒（h）是一种协同激活介质（SAM）转录激活系统，目的在于特定上调基因表达
- PP2A-B55-δ CRISPR 激活质粒 (h)包含三种质量比为1:1:1的质粒：一种质粒编码与转录激活结构域VP64融合的去活化的Cas9 (dCas9)核酸酶(D10A and N863A)，和杀稻瘟素抗性基因；一种质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白，和潮霉素抗性基因；一种质粒编码与两个MS2 RNA适体融合的目标特异的20 nt向导RNA，和嘌呤霉素抗性基因。
- 形成的SAM复合物结合到转录起始位点上游大约200-250 nt的特定位点区域，为高效激活基因提供转录因子的招募
- 由 PP2A-B55-δ CRISPR 激活质粒 (h) 和 PP2A-B55-δ CRISPR 激活质粒 (h2) 编码的 gRNA 分别针对 PPP2R2D 转录起始位点上游的不同调控区域。其中一种或两种设计可能可用
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| 产品名称 | 产品编号 | 规格 | 价格 | 数量 | 收藏夹 | |
PP2A-B55-δCRISPR激活质粒(h) | sc-404806-ACT | 20 µg | $397.00 |
PPP2R2D 编码蛋白磷酸酶 2A（PP2A）的 B55δ 调节亚基。PP2A 是主要的丝氨酸/苏氨酸（Ser/Thr）磷酸酶，通过将其催化活性引导至特定底物来微调信号输出。PP2A‑B55δ 通过调控有丝分裂退出及其他依赖磷酸化的转换过程中的磷酸化动态，参与细胞周期进程与检查点恢复的控制，并在下游影响细胞增殖与应激反应。通过与包括 MAPK 以及 PI3K/AKT 信号相关网络在内的激酶驱动通路整合，PPP2R2D 表达变化或 PP2A‑B55δ 复合体平衡的改变可重塑细胞的磷酸化蛋白组状态。PP2A 全酶（holoenzyme）组成的失调在肿瘤生物学与神经生物学中被广泛研究，被视为影响基因组稳定性、分化以及神经元信号传导的机制之一。
PP2A-B55-δ CRISPR激活质粒（h）提供了一种靶向、非破坏性的方法，可在不改变底层DNA序列的情况下上调内源性PPP2R2D的表达。
PP2A-B55-δ CRISPR激活质粒（h）是一个由三条质粒组成的协同激活介导（SAM）系统，旨在对人类细胞系中的PPP2R2D基因座进行高效、位点特异性的转录上调。该系统以一种携带两个失活突变（D10A 和 N863A）的无催化活性的 Cas9（dCas9）为核心，这些突变消除了核酸酶活性，同时保留了 DNA 结合能力。该 dCas9 与强效转录激活因子 VP64 融合，并与用于筛选的布拉西定抗性基因共同表达。第二个质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白——这一二级激活复合物与dCas9-VP64协同作用，并携带潮霉素抗性基因。第三个质粒编码靶标特异性20 nt sgRNA，其与两个MS2 RNA适配体融合，这些适配体可将MS2-p65-HSF1复合物招募至激活位点，并携带嘌呤霉素抗性基因。这三个质粒按1:1:1的质量比递送，以确保系统所有组分的平衡表达。
在靶位点组装完成后，SAM复合物结合于PPP2R2D转录起始位点上游约200 bp处，VP64、p65和HSF1在此协同作用，招募转录 machinery并驱动内源性PP2A-B55-δ表达上调。与具有核酸酶活性的Cas9不同， dCas9不会引入双链断裂或修改基因组序列，从而保留了原生的PPP2R2D位点，并能够研究内源性位点上依赖于PP2A-B55-δ的转录反应，使其成为功能研究、靶基因鉴定以及在PPP2R2D表达被沉默或降低的肿瘤细胞中模拟PP2A-B55-δ通路恢复的宝贵工具。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。