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MAN2C1 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-404066-ACT | 20 µg | $397.00 |
Humanes MAN2C1 kodiert die zytosolische α‑Mannosidase 2C1, eine Glykosidase, die das Abspalten von α‑1,2-/α‑1,3-/α‑1,6‑Mannoseresten von freien Oligosacchariden katalysiert, die während des Umsatzes von N‑Glykoproteinen freigesetzt werden. Durch seine Beteiligung am zytosolischen Abbau freier Oligosaccharide und an Glykan‑Qualitätskontrollprozessen im Zusammenhang mit der ER‑assoziierten Degradation (ERAD) trägt MAN2C1 zur Regulation der zellulären Proteostase und der Kohlenhydrat‑Homöostase bei. Eine veränderte MAN2C1‑Aktivität kann die Glykanverarbeitung und stressresponsive Signalwege stören und ist daher relevant für Studien zur metabolischen Umprogrammierung, zur Proteinkontrolle sowie zu glykosylierungsassoziierten Phänotypen, die in unterschiedlichen Krankheitskontexten beobachtet werden.
MAN2C1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen MAN2C1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
MAN2C1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des MAN2C1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der MAN2C1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen MAN2C1-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native MAN2C1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von MAN2C1-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des MAN2C1-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem MAN2C1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.