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| Nom du produit | Ref. Catalogue | COND. | Prix HT | QTÉ | Favoris | |
Plasmide Double Nickase (h) FucT-VI | sc-409615-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Plasmide Double Nickase (h2) FucT-VI | sc-409615-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
FUT6 code l’α(1,3)-fucosyltransférase VI (FucT‑VI), une glycosyltransférase résidente de l’appareil de Golgi qui transfère le fucose à partir du GDP‑fucose sur des accepteurs N‑acétyllactosamine afin de générer des glycannes fucosylés de type Lewis X. En façonnant les profils de fucosylation terminale des glycoprotéines et des glycolipides, FucT‑VI contribue à la reconnaissance cellulaire dépendante des glycannes, à l’adhésion des leucocytes et à la régulation des propriétés des récepteurs et des protéines sécrétées au sein des réseaux plus larges de fucosylation et de glycosylation. L’activité de FUT6 est liée à la biosynthèse de certains ligands des sélectines et à la modulation des contextes de signalisation inflammatoire via des épitopes glycanes altérés. Des variations d’expression ou de fonction de FUT6 ont été associées à des modifications des profils de glycosylation sérique et à des phénotypes glycanes pertinents pour les maladies, étudiés en immunologie, en biologie des infections et en oncologie.
FucT-VI Le plasmide double nickase (h) se compose d'une paire de plasmides appariés, conçus pour une édition hautement spécifique du locus FUT6 dans les lignées cellulaires human. Chaque plasmide exprime une nickase Cas9 D10A et un sgRNA distinct ciblant des brins d'ADN opposés au sein de FUT6. Lorsqu'elles sont dirigées vers des sites adjacents sur des brins d'ADN opposés, les deux nickases génèrent des cassures simple brin décalées qui, ensemble, produisent une cassure double brin décalée, nécessitant une activité coordonnée sur la cible de la part des deux guides. La cassure d'ADN qui en résulte est résolue par les voies de réparation cellulaires endogènes, le plus souvent par jonction non homologue (NHEJ), ce qui conduit à des insertions ou des délétions qui perturbent la fonction de FUT6. En nécessitant l'engagement de deux ARNsg au locus cible, l'approche par double nick améliore la spécificité de l'édition et offre une stratégie CRISPR complémentaire pour les applications où un contrôle supplémentaire de la précision du ciblage est souhaité.
Afin de faciliter l'identification efficace des cellules éditées, un plasmide code pour la GFP permettant la visualisation par fluorescence des populations transfectées, tandis que le plasmide compagnon porte un gène de résistance à la puromycine pour la sélection antibiotique. Ensemble, ces caractéristiques favorisent l'enrichissement efficace des populations co-transfectées et simplifient la validation des clones présentant une perturbation de FUT6.
Réservé à la recherche. N'est pas destiné à un usage diagnostique ou thérapeutique.