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PARD6G CRISPR/Cas9 KO质粒 (h2) | sc-403179-KO-2 | 20 µg | $397.00 | |||
PARD6G HDR 质粒 (h2) | sc-403179-HDR-2 | 20 µg | $445.00 |
PARD6G 编码一种 Par-6 家族的支架蛋白,通过在紧密连接处与非典型 PKC(aPKC)和 PAR3 共同组织 PAR 极性复合体,促进顶端–基底极性的建立。借助这些相互作用,PARD6G 协调细胞骨架重塑、囊泡运输与连接结构的装配,从而影响上皮形态发生以及定向细胞迁移。极性信号还与 Rho GTP 酶及 aPKC 依赖的磷酸化通路发生交叉,将空间位置信号与细胞增殖和分化程序相耦联。细胞极性失调常与屏障功能改变及侵袭性表型相关,因此 PARD6G 是研究细胞转化与组织结构紊乱相关机制的一个重要节点。
PARD6G CRISPR/Cas9 敲除质粒(h2)是一组质粒池,旨在针对性地破坏human细胞系中的PARD6G基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对PARD6G基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,PARD6G HDR质粒(h2)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定PARD6G靶位点的同源臂包围。
与 PARD6G CRISPR/Cas9 敲除质粒(h2)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在PARD6G 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。