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JMJD1A CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h) | sc-403423 | 20 µg | $397.00 |
KDM3A kodiert JMJD1A, eine Histon-Demethylase mit Jumonji-C-(JmjC)-Domäne, die vor allem repressive H3K9me1/2-Markierungen entfernt und dadurch die Transkriptionsaktivierung fördert. Durch die Umgestaltung der Chromatinzugänglichkeit moduliert JMJD1A Programme, die mit der Signalübertragung von Hormonrezeptoren, Hypoxieantworten, metabolischer Genexpression und Entscheidungen über Zellschicksale verknüpft sind. Seine Aktivität greift in die epigenetische Regulation von Enhancer- und Promotorzuständen ein und beeinflusst damit Signalwege, die Proliferation, Differenzierung und Stressadaptation steuern. Eine fehlregulierte Expression oder Funktion von KDM3A/JMJD1A wurde mit veränderten Transkriptionsnetzwerken in verschiedenen Krebszusammenhängen und metabolischen Phänotypen in Verbindung gebracht, was die Untersuchung epigenetischer Verwundbarkeiten unterstützt.
Das JMJD1A CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des KDM3A-Gens in human-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid koexprimiert eine einzigartige Single-Guide-RNA (sgRNA), die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des KDM3A-Gens abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease. Die Plasmide kodieren zudem für GFP, was die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie ermöglicht.
Das Multi-Guide-Design erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass Insertionen oder Deletionen (Indels) entstehen, die den offenen Leserahmen von KDM3A nach der Cas9-vermittelten Bildung von Doppelstrangbrüchen unterbrechen. Durch das CRISPR/Cas9-System verursachte DNA-Brüche werden über endogene NHEJ-Wege (Non-Homologous End Joining) repariert, was häufig zu Frameshift-Mutationen führt, die die JMJD1A-Proteinexpression aufheben.
Dieses CRISPR-Knockout-System ermöglicht die effiziente Erzeugung von KDM3A-defizienten Zellmodellen zur Untersuchung der JMJD1A-Signalübertragung, für funktionelle Genomstudien, in der Krebsbiologieforschung sowie zur Bewertung therapeutischer Reaktionen in menschlichen Zelllinien.
CRISPRs +/- HDRs
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.