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Dvl-3/Dishevelled 3/DVL3 Double Nickase Plasmid (m) | sc-420082-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Dvl-3/Dishevelled 3/DVL3 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-420082-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das murine Gen **Dvl3** kodiert **Dishevelled 3 (Dvl-3)**, ein zytoplasmatisches Phosphoprotein, das als zentrales Gerüstprotein im **Wnt-Signalweg** fungiert. Dvl-3 überträgt Signale von **Frizzled-Rezeptoren** an nachgeschaltete Effektoren sowohl in der kanonischen, **β‑Catenin‑abhängigen** Transkription als auch in nicht-kanonischen Wegen wie **planarer Zellpolarität (PCP)** und dem **Wnt/Ca²⁺‑Signalweg** und beeinflusst damit Zellpolarität, Migration und die Umgestaltung des Zytoskeletts. Über diese Netzwerke trägt DVL3 zur embryonalen Musterbildung und zur Gewebehomöostase bei; eine fehlregulierte Wnt–Dishevelled-Signalgebung ist häufig an onkogenen Signalwegen, Entwicklungsdefekten und fibroseassoziiertem Remodeling beteiligt. Eine Störung von **Dvl3** wird daher breit eingesetzt, um den Signalweg‑Crosstalk mit **GSK3β/β‑Catenin**, **JNK‑Signalgebung** und **Small‑GTPase‑vermittelter Aktindynamik** zu untersuchen.
Dvl-3/Dishevelled 3/DVL3 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Dvl3-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Dvl3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Dvl3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Dvl3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.