Aldehyde dehydrogenase 1-A1/ALDH1A1 Plasmídeo de ativação de CRISPR (h): sc-400782-ACT

O ALDH1A1 humano codifica a aldeído desidrogenase citosólica 1-A1, uma enzima dependente de NAD(P)+ que oxida aldeídos alifáticos e aromáticos reativos aos seus ácidos carboxílicos correspondentes, contribuindo para a desintoxicação celular e para a homeostase redox. O ALDH1A1 é um componente-chave do metabolismo de retinoides por meio da conversão de retinaldeído em ácido retinoico, ligando-o a programas transcricionais que controlam a diferenciação, a manutenção epitelial e a adaptação metabólica. Ao limitar o dano causado por aldeídos derivados da peroxidação lipídica e ao modular a sinalização do ácido retinoico, o ALDH1A1 influencia as respostas ao estresse oxidativo e as vias de processamento de xenobióticos. A expressão desregulada de ALDH1A1 tem sido associada a estados de diferenciação alterados, reprogramação metabólica e fenótipos de tolerância ao estresse em diversos modelos celulares relevantes para doenças.

Aldehyde dehydrogenase 1-A1/ALDH1A1 O Plasmídeo de Ativação CRISPR (h) oferece uma abordagem direcionada e não destrutiva para regular positivamente a expressão endógena de ALDH1A1 sem alterar a sequência de ADN subjacente.

Aldehyde dehydrogenase 1-A1/ALDH1A1 O Plasmídeo de Ativação CRISPR (h) é um sistema mediador de ativação sinérgica (SAM) de três plasmídeos, concebido para a regulação positiva transcricional altamente eficiente e específica do locus ALDH1A1 em linhas celulares humanas. O sistema é construído em torno de uma Cas9 cataliticamente inativa (dCas9) portadora de duas mutações inativadoras (D10A e N863A) que eliminam a atividade nuclease, preservando simultaneamente a ligação ao ADN. Esta dCas9 é fundida com VP64, um potente ativador transcricional, e é coexpressa com um gene de resistência à blasticidina para seleção. O segundo plasmídeo codifica a proteína de fusão MS2-p65-HSF1, um complexo ativador secundário que atua em conjunto com o dCas9-VP64, juntamente com um gene de resistência à higromicina. O terceiro plasmídeo codifica um sgRNA de 20 nt específico para o alvo, fundido a dois aptâmeros de RNA MS2 que recrutam o complexo MS2-p65-HSF1 para o local de ativação, acompanhado por um gene de resistência à puromicina. Os três plasmídeos são administrados numa proporção de massa de 1:1:1 para uma expressão equilibrada de todos os componentes do sistema.

Uma vez montado no locus alvo, o complexo SAM liga-se a cerca de 200 pb a montante do local de início da transcrição ALDH1A1, onde VP64, p65 e HSF1 atuam em conjunto para recrutar a maquinaria transcricional e impulsionar a regulação positiva da expressão endógena de Aldehyde dehydrogenase 1-A1/ALDH1A1. Ao contrário da Cas9 com atividade nuclease, o dCas9 não introduz quebras de cadeia dupla nem modifica a sequência genómica, preservando o locus ALDH1A1 nativo e permitindo o estudo de respostas transcricionais dependentes de Aldehyde dehydrogenase 1-A1/ALDH1A1 no locus endógeno, tornando-o uma ferramenta valiosa para estudos funcionais, identificação de genes-alvo e modelagem da restauração da via Aldehyde dehydrogenase 1-A1/ALDH1A1 em células tumorais com expressão de ALDH1A1 silenciada ou reduzida.

Apenas para uso em investigação. Não se destina a uso diagnóstico ou terapêutico.