Date published: 2026-7-14

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SP-lyase CRISPR Activationプラスミド (m): sc-422908-ACT

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  • 対象生物種: mouse
  • 20 µg のトランスフェクション準備済み、精製したプラスミドDNA、~20回トランスフェクション
  • SP-lyase CRISPR Activationプラスミド (m)は、特異的に遺伝子の発現量を増加させるため、相乗的活性化メディエーター(SAM)転写活性化システムです。
  • SP-lyase CRISPR Activationプラスミド (m)は、1:1:1の質量比で以下の3つのプラスミドがら成る:トランス活性化ドメインVP64に溶解する非活性化されたCas9 (dCas9)ヌクレアーゼ(D10A と H840A)をコード化したのプラスミド(ブラストサイジン耐性遺伝子を含めて)、MS2-p65-HSF1融合蛋白質をコード化したのプラスミド(ハイグロマイシン耐性遺伝子を含めて)、2つのMS2 RNAアプタマーに溶解する目標特異的な20ntガイドRNAをコード化したのプラスミド(ピューロマイシン耐性遺伝子を含めて)。
  • 得られたSAM複合体は、部位特異的な約200-250nt転写開始点の上流の領域に結合し、転写因子の強いリクルートメントを提供し、遺伝子の高い活性化効果が得られます。
  • SP-lyase CRISPR活性化プラスミド(m)およびSP-lyase CRISPR活性化プラスミド(m2)によってコードされるgRNAは、Sgpl1転写開始点の上流にある異なる調節領域を標的としています。いずれか一方、または両方のデザインが利用可能である可能性があります
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    注文情報

    製品名カタログ #単位価格数量お気に入り

    SP-lyase CRISPR Activationプラスミド (m)

    sc-422908-ACT
    20 µg
    $397.00

    SP-lyase CRISPR Activationプラスミド (m2)

    sc-422908-ACT-2
    20 µg
    $397.00

    マウスSgpl1はスフィンゴシン-1-リン酸(S1P)リアーゼをコードしており、これは小胞体に関連する酵素で、スフィンゴ脂質代謝ネットワーク内のシグナル伝達を終結させるためにS1Pを不可逆的に分解します。細胞内外のS1P量を制御することで、SP-リアーゼは脂質のレオスタシス(恒常性)や、細胞生存、ストレス応答、遊走、免疫細胞のトラフィッキングを司る下流経路に影響を与えます。SGPL1活性の変化はセラミド—スフィンゴシン—S1P軸を攪乱し、モデル系において炎症性表現型、代謝調節異常、神経・腎の病態生物学と関連づけられてきました。そのため本遺伝子は、スフィンゴ脂質フラックス、バリア/血管シグナル伝達、免疫恒常性の機構を解析する目的で広く用いられています。

    SP-lyase CRISPR活性化プラスミド(m)は、基盤となるDNA配列を変更することなく、内因性Sgpl1の発現を標的化し、非破壊的にアップレギュレートするアプローチを提供します。

    SP-lyase CRISPR 活性化プラスミド (m) は、ヒト細胞株における Sgpl1 遺伝子座の高効率かつ部位特異的な転写アップレギュレーションのために設計された、3 つのプラスミドからなる相乗的活性化メディエーター (SAM) システムです。このシステムは、DNA結合能を維持しつつヌクレアーゼ活性を失わせる2つの不活性化変異(D10AおよびN863A)を有する、触媒活性のないCas9(dCas9)を中核としています。このdCas9は、強力な転写活性化因子であるVP64と融合しており、選別用のブラスティシジン耐性遺伝子と共に共発現します。2番目のプラスミドは、dCas9-VP64と協調して機能する二次活性化複合体であるMS2-p65-HSF1融合タンパク質をコードしており、ヒグロマイシン耐性遺伝子と共に発現する。3番目のプラスミドは、標的特異的な20塩基対のsgRNAをコードしており、これはMS2-p65-HSF1複合体を活性化部位に誘導する2つのMS2 RNAアプタマーと融合しており、さらにピューロマイシン耐性遺伝子が付随している。これら3つのプラスミドは、システム構成要素すべてが均等に発現するよう、質量比1:1:1で導入される。

    標的遺伝子座に集合すると、SAM複合体はSgpl1転写開始点の上流約200 bpの領域に結合し、そこでVP64、p65、およびHSF1が協調して転写装置を動員し、内因性SP-lyaseの発現上昇を促進する。ヌクレアーゼ活性を持つCas9とは異なり、 dCas9は二本鎖切断を導入したりゲノム配列を改変したりしないため、天然のSgpl1遺伝子座が保持され、内因性遺伝子座におけるSP-lyase依存性の転写応答の研究が可能となります。これにより、機能解析、標的遺伝子の同定、およびSgpl1発現が沈黙または低下した腫瘍細胞におけるSP-lyase経路の回復のモデル化を行う上で、貴重なツールとなります。

    研究用のみ。診断用または治療用ではありません。