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KIR2.2 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-421233 | 20 µg | $397.00 | |||
KIR2.2 HDR 质粒 (m) | sc-421233-HDR | 20 µg | $445.00 |
Kcnj12 编码内向整流型钾通道 KIR2.2,它是决定小鼠细胞静息膜电位和膜兴奋性的关键因素。KIR2.2 在超极化电位下选择性传导 K⁺,从而影响离子稳态、动作电位的形态塑造以及电活动与下游信号之间的耦联。KIR2.2 的活性与调控钙离子内流和兴奋–收缩耦联的通路相互关联,进而影响细胞对代谢性及神经体液性刺激的反应。内向整流型 K⁺ 电流的失调常在兴奋性组织的电生理重构及相关功能受损研究中被关注,为通道病以及应激诱导信号变化的机制研究提供支持。
KIR2.2 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Kcnj12基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Kcnj12基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,KIR2.2 HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Kcnj12靶位点的同源臂包围。
与 KIR2.2 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Kcnj12 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。