Plasmide CRISPR/Cas9 KO CMAH (m): sc-419696
- Espèces cibles: mouse
- 20 µg d'ADN plasmidique purifié et prêt à transfecter; Jusqu'à 20 transfections
- CMAH Le plasmide CRISPR/Cas9 Knockout (KO) (m) est un ensemble de plasmides, chacun codant pour la nucléase Cas9 et un ARN guide (gRNA) de 20 nt spécifique à la cible, conçu pour une efficacité de knockout maximale à l'aide de séquences issues de la bibliothèque GeCKO v2
- Les séquences d'ARN guide (gRNA) dirigent Cas9 pour induire des cassures double brin (DSB) spécifiques au site dans le locus génomique CMAH, entraînant un knock-out génique par jonction non homologue (NHEJ)
- Le plasmide HDR CMAH (m) (sc-419696-HDR) est recommandé pour une co-transfection avec le plasmide CRISPR/Cas9 KO CMAH (m) afin de permettre la sélection des cellules éditées avec succès grâce à l'intégration, médiée par HDR, d'un cassette de résistance à la puromycine et d'un gène rapporteur RFP
- Le plasmide HDR CMAH (m) est un ensemble de plasmides, chacun contenant un matrice de réparation dirigée par homologie (HDR) correspondant aux sites cibles de l'ARN guide (gRNA) dans le plasmide CRISPR/Cas9 KO CMAH (m)
- Chaque plasmide HDR contient deux bras d'homologie d'environ 800 pb flanquant les cassettes de résistance à la puromycine et RFP, conçus pour se lier aux séquences d'ADN génomique entourant le site de cassure double brin induit par Cas9 et faciliter une intégration précise médiée par HDR
- Les gènes de résistance à la puromycine et RFP sont flanqués de sites LoxP, permettant la suppression des marqueurs de sélection via la recombinase Cre (Cre Vector : sc-418923) après l'établissement de lignées cellulaires knock-out stables
- Après transfection, l'efficacité de knockout de gène peut être évaluée par WB, IF ou IHC en utilisant l'anticorps: CMAH Antibody (E-7): sc-365023
Informations pour la commande
| Nom du produit | Ref. Catalogue | COND. | Prix HT | QTÉ | Favoris | |
Plasmide CRISPR/Cas9 KO CMAH (m) | sc-419696 | 20 µg | $397.00 | |||
Plasmid HDR CMAH (m) | sc-419696-HDR | 20 µg | $445.00 |
Présentation
Le gène murin *Cmah* code la cytidine monophosphate N-acétylneuraminique acid hydroxylase (CMAH), une enzyme clé du métabolisme des acides sialiques qui convertit le CMP‑Neu5Ac en CMP‑Neu5Gc, façonnant ainsi la composition des glycannes à la surface cellulaire. En modulant l’équilibre des états de sialylation terminale sur les glycoprotéines et les glycolipides, CMAH influence la signalisation dépendante des glycannes, l’engagement des récepteurs et les processus de reconnaissance immunitaire. Des profils Neu5Gc/Neu5Ac altérés ont été associés à des modifications de l’inflammation, des interactions hôte–pathogène et des motifs de glycosylation liés aux tumeurs, faisant de *Cmah* un point d’entrée utile pour étudier la glyco-immunologie et la communication cellule–cellule. Chez la souris, la perturbation de *Cmah* est couramment utilisée pour modéliser des différences de sialylation spécifiques aux espèces et pour analyser comment le remodelage des glycannes affecte la physiologie et des phénotypes pertinents pour les maladies.
Le CMAH CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m) est un ensemble de plasmides conçus pour la disruption ciblée du gène Cmah dans les lignées cellulaires mouse. Chaque plasmide du pool co-exprime un sgRNA unique, ciblant un site distinct au sein du locus Cmah, ainsi que la nucléase Cas9 de Streptococcus pyogenes, et code pour la GFP afin de permettre l'identification par fluorescence et l'enrichissement des cellules transfectées avec succès. Cette stratégie multi-guide augmente la probabilité d'induire des décalages de cadre ou des délétions produisant un knock-out fonctionnel, offrant ainsi une alternative plus robuste aux approches à guide unique. Les cassures double brin (DSB) induites à plusieurs sites sont résolues par jonction non homologue (NHEJ) ou, lorsqu'elles sont utilisées avec le modèle donneur HDR inclus, par réparation dirigée par homologie (HDR) à un site cible défini au sein du locus.
Lorsqu'il est utilisé en conjonction avec le donneur HDR exprimant la RFP, les fluorescences GFP et RFP peuvent être utilisées conjointement pour distinguer les populations de cellules transfectées de celles éditées, rationalisant ainsi les workflows de tri par cytométrie en flux et de sélection de clones.
Donneur de réparation dirigée par homologie (HDR) — Cassette de puromycine avec rapporteur RFP
Pour les applications nécessitant des clones knock-out confirmés et sélectionnables, le CMAH plasmide HDR (m) comprend une construction donneuse HDR contenant une cassette de résistance à la puromycine (PuroR) et un rapporteur protéine fluorescente rouge (RFP), flanquée de bras d'homologie spécifiques à un site cible Cmah défini.
Lorsqu'il est co-transfecté avec le plasmide CMAH CRISPR/Cas9 KO (m):
- La cassette PuroR-RFP s'intègre au site de coupure de Cas9 via HDR, perturbant le cadre de lecture ouvert Cmah.
La fluorescence RFP fournit un indicateur visuel immédiat de la réussite de l'intégration, permettant l'identification ou le tri par fluorescence des cellules éditées avant ou parallèlement à la sélection par la puromycine.
Les cellules éditées avec succès sont confirmées par leur résistance à la puromycine, ce qui réduit considérablement la charge de criblage des clones.
Cette stratégie de sélection est idéale pour générer des lignées cellulaires KO clonales stables destinées à des études fonctionnelles en aval, au criblage de médicaments ou au développement de modèles.
Système de suppression de la cassette Cre-lox
La construction donneuse HDR comporte des sites loxP flanquant la cassette de sélection PuroR-RFP afin de permettre une suppression propre du marqueur après confirmation du clone. L'expression transitoire de la recombinase Cre via le vecteur Cre inclus Cre Vector: sc-418923 excise la cassette, laissant un site loxP résiduel minimal au sein du locus Cmah et éliminant les effets de confusion potentiels sur les tests en aval.
Cette approche en deux étapes :
- Minimise la perturbation de l'architecture locale de la chromatine et des éléments régulateurs voisins
Restaure un contexte génomique quasi-naturel au niveau du locus édité
Permet la réutilisation de la stratégie de sélection à la puromycine dans la même lignée cellulaire pour des modifications supplémentaires
Caractéristiques principales
- gRNA ciblant le ou les exons Cmah essentiels à la fonction CMAH
Co-expression de SpCas9 et de sgRNA à partir d'un seul plasmide pour une administration simplifiée
Donneur HDR avec résistance à la puromycine pour une sélection positive des clones
Cassette PuroR flanquée de loxP avec vecteur de recombinase Cre pour une suppression transparente du marqueur
Fourni prêt à l'emploi pour une administration par transfection
Réservé à la recherche. N'est pas destiné à un usage diagnostique ou thérapeutique.