Date published: 2026-8-31

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CDKN1B/Kip1 p27 Double Nickase Plasmid (h): sc-400074-NIC

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Datenblätter
  • Zielspezies: human
  • 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
  • Das CDKN1B/Kip1 p27 Double Nickase Plasmid (h) wird als Plasmid-Paar geliefert. Die einzelnen Plasmide kodieren für eine D10A mutierte Cas9 Nuklease sowie für je eine unterschiedliche, zielspezifische 20nt guide RNA (gRNA) Sequenz. Dies erlaubt eine hohe Knockout-Effizienz bei gleichzeitig größerer Spezifität als das entsprechende CRISPR/Cas9 KO Plasmid
  • gRNA Sequenzpaare liegen ca. 20 bp auseinander um ein spezifisches Cas9-vermitteltes "Double Nicking" der genomischen DNA zu erlauben und so im Resultat den Effekt eines Doppelstrangbruchs nachzuahmen.
  • Ein Plasmid kodiert für ein Puromycin-Resistenzgen zur Selektion von stabilen Knockout-Zellen. Das andere Plasmid kodiert für ein GFP-Gen für den visuellen Nachweis der Transfektion
  • CDKN1B/Kip1 p27 Double-Nickase-Plasmid (h) und CDKN1B/Kip1 p27 Double-Nickase-Plasmid (h2) kodieren unterschiedliche gepaarte gRNA-Designs, die auf CDKN1B abzielen. Möglicherweise ist eines oder sind beide Designs verfügbar
  • Nach der Transfektion kann die Effizienz des Gen-Knockouts per Western Blot oder histologisch mit folgendem Antikörper überprüft werden: CDKN1B/Kip1 p27: sc-1641
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    ProduktKatalog #EINHEITPreisANZAHLFavoriten

    CDKN1B/Kip1 p27 Double Nickase Plasmid (h)

    sc-400074-NIC
    20 µg
    $410.00

    CDKN1B/Kip1 p27 Double Nickase Plasmid (h2)

    sc-400074-NIC-2
    20 µg
    $410.00

    CDKN1B kodiert p27^Kip1, einen cyclinabhängigen Kinase-Inhibitor, der den von CDK2 sowie CDK4/6 getriebenen Übergang durch den G1/S-Kontrollpunkt bremst, indem er Cyclin‑E/A–CDK2- und Cyclin‑D–CDK4/6-Komplexe moduliert. p27 integriert mitogene Signale und wachstumshemmende Reize, um Zellzyklusarrest, zelluläre Quieszenz und Differenzierung zu steuern; die Regulation erfolgt über phosphorylierungsabhängige subzelluläre Lokalisation und proteasomalen Abbau über SCF-Ubiquitin-Ligasen. Eine veränderte CDKN1B-Expression oder -Stabilität ist häufig mit dysregulierter Proliferation und fehlerhafter Kontrollpunktsteuerung verbunden, was das Gen für Studien zu onkogenem Signaling, Linienfestlegung und Stressantworten in humanen Zellen relevant macht.

    CDKN1B/Kip1 p27 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CDKN1B-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CDKN1B abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CDKN1B-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.

    Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CDKN1B-Störung.

    Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.