SP-lyase CRISPR Activationプラスミド (h): sc-402278-ACT
- 対象生物種: human
- 20 µg のトランスフェクション準備済み、精製したプラスミドDNA、～20回トランスフェクション
- SP-lyase CRISPR Activationプラスミド (h)は、特異的に遺伝子の発現量を増加させるため、相乗的活性化メディエーター(SAM)転写活性化システムです。
- SP-lyase CRISPR Activationプラスミド (h)は、1:1:1の質量比で以下の3つのプラスミドがら成る：トランス活性化ドメインVP64に溶解する非活性化されたCas9 (dCas9)ヌクレアーゼ(D10A と H840A)をコード化したのプラスミド（ブラストサイジン耐性遺伝子を含めて）、MS2-p65-HSF1融合蛋白質をコード化したのプラスミド（ハイグロマイシン耐性遺伝子を含めて）、2つのMS2 RNAアプタマーに溶解する目標特異的な20ntガイドRNAをコード化したのプラスミド（ピューロマイシン耐性遺伝子を含めて）。
- 得られたSAM複合体は、部位特異的な約200-250nt転写開始点の上流の領域に結合し、転写因子の強いリクルートメントを提供し、遺伝子の高い活性化効果が得られます。
- SP-lyase CRISPR活性化プラスミド（h）およびSP-lyase CRISPR活性化プラスミド（h2）によってコードされるgRNAは、SGPL1転写開始点の上流にある異なる調節領域を標的としています。いずれか一方、または両方のデザインが利用可能である可能性があります
注文情報
| 製品名 | カタログ # | 単位 | 価格 | 数量 | お気に入り | |
SP-lyase CRISPR Activationプラスミド (h) | sc-402278-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
SP-lyase CRISPR Activationプラスミド (h2) | sc-402278-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
ヒトSGPL1はスフィンゴシン-1-リン酸リアーゼ（SP-lyase）をコードしており、これは小胞体に関連する酵素で、スフィンゴシン-1-リン酸（S1P）をホスホエタノールアミンと長鎖アルデヒドへ不可逆的に分解することで、S1Pシグナル伝達を終結させます。S1Pとセラミド／スフィンゴシンのバランスを制御することにより、SGPL1はスフィンゴ脂質の恒常性を調節し、細胞生存、炎症性シグナル伝達、脂質介在性ストレス応答に関連する経路に影響を及ぼします。SGPL1活性は、S1P勾配および受容体依存性シグナル伝達の調節を通じて、免疫細胞のトラフィッキングや血管生物学にも影響します。SGPL1機能の変化とスフィンゴ脂質代謝の破綻は、先天性の多臓器疾患や、ステロイド産生、神経発達、腎機能に関わるより広範な表現型と関連づけられており、脂質シグナルの機序研究における重要な標的となっています。
SP-lyase CRISPR活性化プラスミド（h）は、基盤となるDNA配列を変更することなく、内因性SGPL1の発現を標的化し、非破壊的にアップレギュレートするアプローチを提供します。
SP-lyase CRISPR 活性化プラスミド (h) は、ヒト細胞株における SGPL1 遺伝子座の高効率かつ部位特異的な転写アップレギュレーションのために設計された、3 つのプラスミドからなる相乗的活性化メディエーター (SAM) システムです。このシステムは、DNA結合能を維持しつつヌクレアーゼ活性を失わせる2つの不活性化変異（D10AおよびN863A）を有する、触媒活性のないCas9（dCas9）を中核としています。このdCas9は、強力な転写活性化因子であるVP64と融合しており、選別用のブラスティシジン耐性遺伝子と共に共発現します。2番目のプラスミドは、dCas9-VP64と協調して機能する二次活性化複合体であるMS2-p65-HSF1融合タンパク質をコードしており、ヒグロマイシン耐性遺伝子と共に発現する。3番目のプラスミドは、標的特異的な20塩基対のsgRNAをコードしており、これはMS2-p65-HSF1複合体を活性化部位に誘導する2つのMS2 RNAアプタマーと融合しており、さらにピューロマイシン耐性遺伝子が付随している。これら3つのプラスミドは、システム構成要素すべてが均等に発現するよう、質量比1:1:1で導入される。
標的遺伝子座に集合すると、SAM複合体はSGPL1転写開始点の上流約200 bpの領域に結合し、そこでVP64、p65、およびHSF1が協調して転写装置を動員し、内因性SP-lyaseの発現上昇を促進する。ヌクレアーゼ活性を持つCas9とは異なり、 dCas9は二本鎖切断を導入したりゲノム配列を改変したりしないため、天然のSGPL1遺伝子座が保持され、内因性遺伝子座におけるSP-lyase依存性の転写応答の研究が可能となります。これにより、機能解析、標的遺伝子の同定、およびSGPL1発現が沈黙または低下した腫瘍細胞におけるSP-lyase経路の回復のモデル化を行う上で、貴重なツールとなります。
研究用のみ。診断用または治療用ではありません。