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METTL11A CRISPR/Cas9 KO质粒 (h) | sc-412015 | 20 µg | $397.00 | |||
METTL11A HDR 质粒 (h) | sc-412015-HDR | 20 µg | $445.00 |
NTMT1(又称 METTL11A)编码一种N端甲基转移酶,可在起始甲硫氨酸被去除后催化蛋白质N端的α-N-甲基化,从而影响蛋白质组的稳定性及蛋白—蛋白相互作用。这种修饰会影响蛋白质周转、亚细胞定位以及多蛋白复合物的组装,使NTMT1活性与细胞周期进程调控和应激响应信号通路相关联。N端甲基化状态的改变与增殖失调及基因组维护程序异常有关,因此在癌症生物学以及其他蛋白质稳态(proteostasis)受扰的情境中,NTMT1是开展机制研究的有用靶点。人METTL11A的功能也常与类似表观遗传的蛋白质修饰联系起来研究,这些修饰可协同协调转录层面与翻译后层面的调控。
METTL11A CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)是一组质粒池,旨在针对性地破坏human细胞系中的NTMT1基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对NTMT1基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,METTL11A HDR质粒(h)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定NTMT1靶位点的同源臂包围。
与 METTL11A CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在NTMT1 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。