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LC3B Double Nickase Plasmid (m) | sc-426563-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
LC3B Double Nickase Plasmid (m2) | sc-426563-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das murine Gen **Map1lc3b** kodiert das mikrotubuliassoziierte Protein 1, Leichtkette 3 Beta (LC3B), eine zentrale Komponente der Autophagie-Maschinerie, die durch Lipidierung zu **LC3-II** umgewandelt wird und mit Autophagosomenmembranen assoziiert. LC3B unterstützt die Expansion des Phagophors, die Reifung des Autophagosoms sowie den selektiven Abbau von Fracht durch Interaktionen mit LIR-haltigen Rezeptoren wie **p62/SQSTM1**, wodurch ubiquitinierte Substrate mit der autophagischen Sequestrierung verknüpft werden. Als weit verbreiteter Marker des autophagischen Flusses ist LC3B zentral für lysosomenabhängige Proteostasewege, die sich mit der mitochondrialen Qualitätskontrolle, angeborenen Immun-Signalwegen und zellulären Stressantworten überschneiden. Eine Fehlregulation der LC3B-assoziierten Autophagie wurde mit Mechanismen in Verbindung gebracht, die für Neurodegeneration, Entzündungszustände, Infektionsbiologie und die Anpassung von Krebszellen relevant sind, wodurch **Map1lc3b** ein häufiges Ziel zur Analyse entsprechender Signalwege darstellt.
LC3B Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Map1lc3b-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Map1lc3b abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Map1lc3b-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Map1lc3b-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.