Glycophorin ACRISPR激活质粒(h): sc-417801-ACT
- 针对种属：human
- 20 µg 纯化的即用型的质粒DNA，最多可供20次转染
- Glycophorin A CRISPER激活质粒（h）是一种协同激活介质（SAM）转录激活系统，目的在于特定上调基因表达
- Glycophorin A CRISPR 激活质粒 (h)包含三种质量比为1:1:1的质粒：一种质粒编码与转录激活结构域VP64融合的去活化的Cas9 (dCas9)核酸酶(D10A and N863A)，和杀稻瘟素抗性基因；一种质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白，和潮霉素抗性基因；一种质粒编码与两个MS2 RNA适体融合的目标特异的20 nt向导RNA，和嘌呤霉素抗性基因。
- 形成的SAM复合物结合到转录起始位点上游大约200-250 nt的特定位点区域，为高效激活基因提供转录因子的招募
- 由 Glycophorin A CRISPR 激活质粒 (h) 和 Glycophorin A CRISPR 激活质粒 (h2) 编码的 gRNA 分别针对 GYPA 转录起始位点上游的不同调控区域。其中一种或两种设计可能可用
- 转染后，基因敲除效率可以用抗体：Glycophorin A: sc-53905，通过WB, IF或者IHC分析
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Glycophorin ACRISPR激活质粒(h) | sc-417801-ACT | 20 µg | $397.00 |
GYPA 编码糖蛋白 A（glycophorin A），它是人类红细胞膜上一种丰度极高的唾液酸化糖蛋白，参与维持红细胞表面电荷、膜稳定性以及与细胞外环境的相互作用。作为 MNS 血型抗原的主要载体，GYPA 有助于界定红细胞的抗原特征，并影响细胞—细胞识别和免疫相容性等过程。GYPA 表达水平或序列的变异与多种血液学表型及输血免疫学相关，并且在红系发生与红细胞分化研究中常被用作谱系标记物。糖蛋白 A 的生物学特性也常被用于解析红细胞表面的宿主—病原体相互作用，以及研究红系细胞中膜蛋白转运与糖基化调控机制。
Glycophorin A CRISPR激活质粒（h）提供了一种靶向、非破坏性的方法，可在不改变底层DNA序列的情况下上调内源性GYPA的表达。
Glycophorin A CRISPR激活质粒（h）是一个由三条质粒组成的协同激活介导（SAM）系统，旨在对人类细胞系中的GYPA基因座进行高效、位点特异性的转录上调。该系统以一种携带两个失活突变（D10A 和 N863A）的无催化活性的 Cas9（dCas9）为核心，这些突变消除了核酸酶活性，同时保留了 DNA 结合能力。该 dCas9 与强效转录激活因子 VP64 融合，并与用于筛选的布拉西定抗性基因共同表达。第二个质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白——这一二级激活复合物与dCas9-VP64协同作用，并携带潮霉素抗性基因。第三个质粒编码靶标特异性20 nt sgRNA，其与两个MS2 RNA适配体融合，这些适配体可将MS2-p65-HSF1复合物招募至激活位点，并携带嘌呤霉素抗性基因。这三个质粒按1:1:1的质量比递送，以确保系统所有组分的平衡表达。
在靶位点组装完成后，SAM复合物结合于GYPA转录起始位点上游约200 bp处，VP64、p65和HSF1在此协同作用，招募转录 machinery并驱动内源性Glycophorin A表达上调。与具有核酸酶活性的Cas9不同， dCas9不会引入双链断裂或修改基因组序列，从而保留了原生的GYPA位点，并能够研究内源性位点上依赖于Glycophorin A的转录反应，使其成为功能研究、靶基因鉴定以及在GYPA表达被沉默或降低的肿瘤细胞中模拟Glycophorin A通路恢复的宝贵工具。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。