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TRIM7 CRISPR/Cas9 KO质粒 (h) | sc-410168 | 20 µg | $397.00 | |||
TRIM7 HDR 质粒 (h) | sc-410168-HDR | 20 µg | $445.00 |
TRIM7 编码一种含三联基序(tripartite motif)的 E3 泛素连接酶,参与依赖泛素的蛋白质周转与信号调控,将底物识别与蛋白酶体降解相连接。通过调节蛋白稳定性,TRIM7 可在不同互作伙伴与细胞情境下影响先天免疫信号、应激反应以及细胞骨架或囊泡动力学等过程。TRIM7 活性改变与泛素信号网络失衡有关,而这类失衡与炎症及癌症相关表型存在关联,因此 TRIM7 是研究蛋白质稳态(proteostasis)与信号转导的一个重要节点。作为人类 TRIM 家族成员,TRIM7 常被用于研究宿主–病原体相互作用以及由泛素化介导的通路调控。
TRIM7 CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)是一组质粒池,旨在针对性地破坏human细胞系中的TRIM7基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对TRIM7基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,TRIM7 HDR质粒(h)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定TRIM7靶位点的同源臂包围。
与 TRIM7 CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在TRIM7 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。