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TGase6 Plasmide di attivazione CRISPR (h) | sc-404254-ACT | 20 µg | $397.00 |
Il gene umano **TGM6** codifica la transglutaminasi 6 (TGase6), un enzima Ca2+-dipendente che catalizza reazioni di reticolazione proteica e di transamidazione, modulando la stabilità delle proteine, l’organizzazione della matrice extracellulare e la dinamica del citoscheletro. Attraverso la regolazione delle interazioni proteina–proteina e delle modifiche post-traduzionali, TGase6 può influenzare vie di segnalazione legate all’adesione cellulare, alla differenziazione e alle risposte allo stress. L’espressione di TGM6 e l’attività della famiglia delle TGasi sono state studiate nel contesto della biologia neuronale ed epiteliale, dove un’omeostasi alterata della reticolazione può incidere sulla proteostasi e sulla segnalazione cellula–matrice. La disregolazione di TGase6 è stata associata a fenotipi rilevanti per la neurobiologia e a firme molecolari collegate a malattie, supportandone l’impiego come bersaglio per studi meccanicistici del controllo trascrizionale e del rimodellamento delle vie a valle.
TGase6 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di TGM6 senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
TGase6 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus TGM6 nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione TGM6, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di TGase6. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus TGM6 nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da TGase6 nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via TGase6 nelle cellule tumorali con espressione di TGM6 silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.